Как сдавать кал на яйцеглист у детей: Анализ на яйца глистов. Как сдавать кал на я/глист

Содержание

Анализ кала на яйца глистов

  • Детская клиника «Санаре»
  • Услуги
  • Анализы
  • Анализ кала

Анализ кала на простейшие и яйца глистов у детей проводят в целях диагностики паразитарных заболеваний при наличии клинических проявлений, а также для профилактики распространения инфекций.

Перед поступлением в детский сад, при оформлении медицинской карты ребенку в учебные учреждения однократно проводится исследование кала на простейшие и яйца гельминтов.

Трехкратное (с интервалом в 2-4 дня) исследование кала на простейшие и яйца гельминтов рекомендуется в случае, если имеются какие-либо жалобы для установления диагноза, а также для контроля эффективности лечения.

Основное значение имеет обнаружение в кале следующих простейших:

Entamoeba Histolytica (дизентерийная амеба) паразитирует в кишечнике человека, вызывает амёбиаз. Инфекция может протекать в острой и хронической формах, возможно носительство.

Lamblia intestinalis (лямблии) паразитируют в тонкой кишке, преимущественно в двенадцатиперстной кишке, а также желчном пузыре.

Balantidium coli (балантидий) паразитирует в кишечнике человека и вызывает заболевания различной степени тяжести от лёгких колитов до тяжёлых язвенных поражений. Возможно носительство у здоровых людей.

Действие глистов (гельминтов) на человека многообразно. Они могут вызывать токсические и токсико-аллергические явления, механически травмировать стенку кишечника, вызывать изменения в крови, приводить к нарушениям обмена веществ и авитаминозу.

В кале наиболее часто обнаруживают яйца аскарид, власоглава, различных видов двуустки, цепней и др.

Как собрать кал для анализа на простейшие и яйца гельминтов у детей

  • Кал собирается в стерильный контейнер с завинчивающейся крышкой и ложечкой, который необходимо заранее получить в медицинском центре Санаре бесплатно или приобрести в аптеке.
  • Контейнер наполняется не более 1/3 его объёма.
  • На контейнере необходимо разборчиво указать фамилию, инициалы ребенка, дату его рождения, дату и время сбора материала.
  • Оптимально доставить материал в медицинский центр в день сбора.
  • До отправки материал должен храниться в холодильнике при +4…+8°С, максимально допустимое время хранения кала 8-12 часов.

Анализ кала ребенку на дому

При необходимости, предварительно собранный биоматериал (кал для исследования) в клинику может доставить курьер.

Результаты лабораторных исследований можно получить по электронной почте, а также лично у администраторов медицинского центра.

Приходите к нам и будьте здоровы!

Как правильно подготовить ребенка к сдаче анализов

21.09.2016

Рано или поздно каждой маме приходится сдавать с ребенком анализы. Как сделать это правильно? 

Общий анализ крови

Сдавать анализы приходится всем детям, даже самым здоровым. Обычно исследовать кровь и мочу нужно к 3-му месяцу жизни ребенка, а затем в 1 год. Эти сроки приурочены к моменту проведения прививок (АКДС и против кори и паротита). Задача врача — отобрать на вакцинацию здоровых малышей, чтобы избежать постпрививочных осложнений.

Общий анализ крови выполняется натощак, поэтому до исследования кормить ребенка не рекомендуется. В противном случае может измениться ряд показателей крови (например, увеличится количество лейкоцитов). Из-за этого врач получит ложную информацию. Иногда это случается, когда ребенок кричит, вырывается из ваших рук во время взятия у него крови. Поэтому получение «хорошего анализа» может зависеть от ловких рук лаборанта. Если тот быстро сумеет взять кровь у малыша, то результат исследования будет правдивым. Ожидая очередь, постарайтесь занять ребенка чтением увлекательной книжки или тихой игрой. Малышу не следует сдавать кровь после рентгенологического исследования и физиопроцедуры.

Общий анализ мочи

Что касается этого анализа, то для него необходима утренняя концентрированная моча — то, что выработали почки ребенка за ночь. В идеале мочу собирают в середине мочеиспускания. Для этого ей дают частично вытечь в горшок (или унитаз), и только после этого под струю подставляют чистую 250-миллилитровую баночку.

Для получения точных результатов перед сбором мочи необходимо провести тщательный туалет наружных половых органов ребенка. У девочки ваткой, смоченной теплой водой, осторожно промывают область между половыми губами. У мальчика во время подмывания слегка сдвигают кожицу с головки полового члена.

Если вам не удалось собрать мочу в чистую баночку, то отложите сдачу анализа на следующее утро. Брать мочу из горшка не следует. Лаборант может выдать ошибочное заключение.

Баночку с мочой необходимо доставить в лабораторию сразу после сбора. Из-за продолжительного хранения мочи результат исследования может поменяться коренным образом. Не нужно ставить мочу в холодильник, тем более замораживать ее. Выпадающие в осадок соли «перемороженной мочи» могут быть расценены как проявление почечной патологии, либо это затруднит процесс исследования.

Собрать утреннюю мочу у грудного ребенка бывает сложно. Поэтому для исследования берут то, что маме удалось собрать. Для девочки можно взять чистую тарелку и подложить ее под ягодицы ребенка. У мальчика собирают мочу, просто опустив половой член в чистую баночку. Чтобы ускорить процесс, можно погладить ребенку животик или открыть кран с водой.

Можно воспользоваться также специальным детским одноразовым мочесборником. Это небольшой прозрачный вытянутый мешочек с отверстием и липнущей окантовкой. Он продаётся в аптеке и подходит как для девочек, так и для мальчиков. Лучше приобрести сразу несколько мочеприёмников — на тот случай, если один вы вдруг испортите. Для сбора мочи прикрепите мочесборник согласно прилагаемой инструкции. Но не забудьте сначала подмыть и хорошенько вытереть ребенка, иначе мочесборник может не приклеиться. Как только он будет заполнен, аккуратно сложите клеевую основу мочесборника, закрыв отверстие.

Исследование на глисты

Перед поступлением в детский сад или в школу к обязательным исследованиям ребенка присоединяются анализ кала на яйца глист и соскоб на энтеробиоз.

Для первого анализа существуют определенные правила сбора. За 2-3 дня до исследования не рекомендуется ставить ребенку клизмы. Нельзя накануне исследования принимать лекарственные вещества: слабительные, активированный уголь, препараты железа, меди, висмута, а также использовать ректальные свечи.

В идеале перед забором кала малыш должен помочиться в унитаз или горшок. Испражнения для исследования должны быть «чистыми», то есть не загрязненными мочой. Кал необходимо собирать из трех разных мест в объеме примерно 2 столовые ложки в чистую, сухую, широкогорлую посуду из светлого стекла. Кал доставляют в лабораторию непосредственно после его сбора.

Соскоб на энтеробиоз у ребенка обычно берут прямо в поликлинике. Исследование рекомендуется проводить утром сразу после пробуждения перед дефекацией и мочеиспусканием, до подмывания и душа

К сожалению, эти анализы далеко не всегда дают достоверные результаты. Обнаружить паразитов, оказывается, не так-то просто. Однократный анализ выявляет около 50% зараженных, трехкратный — до 90%. Поэтому если есть серьезное подозрение, врач после отрицательного ответа назначит подобное исследование еще раз. 

Анализ крови на сахар и «биохимию»

С помощью этих анализов крови можно судить о состоянии большинства органов и систем детского организма. В частности, для исключения сахарного диабета определяется содержание сахара в крови.

А чтобы доктор мог «определиться» с работой почек, печени, поджелудочной железы и сердца, существует «биохимия крови».

Кровь на сахар сдают только натощак, то есть когда между последним приемом пищи и взятием крови проходит не менее 8 часов (желательно — не менее 12 часов). Сок, чай, тем более с сахаром — тоже еда, поэтому малышу придется немного потерпеть. Обычно в детской поликлинике анализ на сахар сдают вне очереди. 

Анализ крови на свертываемость

Если ребенку предстоит операция, то обычно ему назначается анализ крови на свертываемость. Его задача — определить продолжительность кровотечения и свертывания крови.

Дополнительные анализы мочи

Для выявления болезней почек и мочевыводящих путей и установления ряда других заболеваний анализ мочи просто необходим. Об общем анализе мы уже говорили. Однако есть другие виды исследований, и правила сбора мочи для каждого из них совершенно разные.

Моча по методу Нечипоренко

Это исследование выполняется, если общий анализ мочи недостаточно информативен. Моча собирается из «середины» струи. Первое количество мочи пропускается, затем подставляется баночка, в которую собирается немного мочи для исследования, и последняя струйка снова отправляется в горшок. В лаборатории с помощью микроскопа определят точное количество лейкоцитов, эритроцитов и цилиндров. В результатах нормального анализа количество лейкоцитов не должно превышать 4000, эритроцитов — 2000, цилиндров — 2000 в 1 мл.

Моча на сахар

Моча собирается в течение суток, но в одну, общую емкость — в 3-литровую банку. Утром, сразу после сна ребенок мочится в горшок. Но его содержимое не нужно брать для анализа. Далее, в течение всего дня, ночи и утром следующего дня мочу ребенка собирают в банку. Хранить ее лучше всего в холодильнике при температуре от 4 до 8 градусов тепла. При комнатной температуре уровень глюкозы может снизиться. Все количество собранной мочи приносить в лабораторию не нужно. После окончания сбора нужно хотя бы приблизительно определить объем мочи и указать его в направлении. После этого необходимо мочу перемешать и отлить для предстоящего исследования 70-100 мл в чистую баночку.

Моча по методу Зимницкого

Мочу для такого обследования собирают в течение суток. С вечера приготовьте восемь баночек. На восьми листочках укажите время: 6-9 часов, 9-12 и т.д. с интервалом в 3 часа. Каждое мочеиспускание должно быть произведено в баночку, соответствующую определенному интервалу времени. Если ребенок забыл помочиться, напомните ему об этом, но ни в коем случае не принуждайте. Мочу до исследования храните при комнатной температуре. Утром отнесите баночки (в том числе и незаполненные) в лабораторию.

Моча на посев

Моча собирается так же, как по методу Нечипоренко — из «середины» струи. Правда, для этого исследования необходима стерильная пробирка (ее предварительно получают в лаборатории). Перед сбором материала наружные половые органы ребенка моют с мылом и кипяченой водой. Мочи для исследования нужно немного — 3-10 мл. Главное — поплотнее закрыть пробирку стерильной пробкой и отнести ее в лабораторию в ближайшее время.

Копрограмма

Если у ребенка появились «неприятности» с животом, врач обычно назначает исследование кала. Разобраться с составом кала, узнать, как переваривается пища, помогает особый анализ — копрограмма. При ее проведении специальной подготовки ребенка не требуется. Правда, копрологическое исследование также не рекомендуется проводить после клизм, свечей, приема слабительных и препаратов железа. 

Анализ кала на скрытую кровь

Цель этого анализа — выявить наличие кровоточивости слизистой пищевода, желудка и кишечника. Например, при язве желудка или 12-перстной кишки в просвет желудка или кишки может выделяться небольшое количество крови, невидное на глаз. Естественно, в таком исследовании нет необходимости, если кровотечение видно невооруженным глазом.

Для сдачи анализа кала на скрытую кровь необходимо подготовиться. За два-три дня (а если есть запор, то за четыре дня) не рекомендуется чистить зубы. Вместо чистки снимайте у ребенка зубной налет марлевой салфеткой или следите за тем, чтобы он полоскал рот. Следующий момент подготовки к анализу — исключение из рациона мяса, рыбы, яиц. А также помидоров, зеленых частей растительной пищи. Эти меры необходимы, чтобы предупредить ложноположительные результаты пробы.

Бактериологическое исследование кала

При подозрениях на дисбактериоз или кишечную инфекцию назначается посев кала на микрофлору. По возможности сбор материала должен осуществляться до назначения антибиотиков. Если это невозможно, то не ранее, чем через 12 часов после отмены препарата.

Кал для исследования собирается в стерильный флакон стерильной ложкой (их предварительно получают в лаборатории). Кал забирается из разных участков испражнений в количестве 1-2 ложек. Если в испражнениях есть гной, слизь, хлопья, то их обязательно забирают для анализа. Флакон плотно закрывается пробкой. Материал доставляют в лабораторию в течение 3 часов с момента сбора. В течение указанного времени кал желательно хранить в прохладном месте. Для этого можно обложить флакон заранее приготовленными кубиками льда.

Анализ мокроты

Если есть подозрение на заболевание органов дыхания, ребенку назначается анализ мокроты. Для общего анализа мокроту собирают в чистую баночку. Если же врач назначил ребенку бактериологическое исследование, то для него необходима стерильная посуда (ее вам выдадут в поликлинике). Последнее исследование позволяет определить, какими микробами вызвано легочное заболевание. Обычно этот анализ выполняется при пневмонии и обострениях хронических заболеваний органов дыхания.

Собирают мокроту во время утреннего откашливания. В собранном материале не должно быть слюны. Перед откашливанием ребенок должен почистить зубы и прополоскать рот кипяченой водой. Это нужно, чтобы в мокроту не попадали частички пищи, микроорганизмы и клетки слизистой ротовой полости.

Если мокроты мало, то можно дать ребенку горячий чай. Как только он закашляется, подставьте ему баночку, чтобы он сплюнул в нее мокроту. Достаточно сделать 2-3 плевка. Если мокрота отходит с трудом, попросите малыша сделать несколько глубоких вдохов и выдохов. Если ребенок маленький, можно положить его животом к себе на колени так, чтобы его голова и грудь свешивались. После этого нужно выполнить вибрационный массаж ритмичными ударами кончиками пальцев одной руки, расположенной вдоль межреберья ребенка. Этот прием облегчит отхождение мокроты из бронхов.

Мокрота образуется при патологии бронхов и альвеол. По цвету мокроты обычно определяют ее характер. Слизистая мокрота — бесцветная. Зеленоватый или желто-зеленый цвет говорит о наличии в ней гноя. Это характерно для бронхита, пневмонии, нагноительных заболеваниях легких. Очень тревожный признак — наличие крови в мокроте. Он заставляет предполагать такие серьезные болезни, как туберкулез, некоторые пороки сердца. Это сигнал к серьезному обследованию.

 

 


 

Все статьи

Пересадка кала | Медицина Джона Хопкинса

Если вы испытываете повторяющиеся инфекции Clostridium difficile (C. diff.) в толстой кишке, ваш врач может порекомендовать фекальную трансплантацию.

Что тебе нужно знать

  • Трансплантацию кала также называют трансплантацией фекальной микробиоты (ТФМ), трансплантацией кала, бактериотерапией или трансплантацией кишечной микробиоты.
  • FMT в основном используется для лечения персистирующих инфекций, вызванных C. diff.
  • Процедура заключается в взятии здоровых бактерий (микробиоты) из фекалий тщательно проверенного донора и переносе их в толстую кишку реципиента.
  • Фекальная трансплантация обычно выполняется с помощью колоноскопии; однако его также можно выполнить с помощью верхней эндоскопии.

Что такое фекальная трансплантация?

Трансплантация кала — это процедура сбора фекалий, также называемых стулом или фекалиями, от здорового донора и введения их в желудочно-кишечный тракт пациента. Процедура может контролировать инфекцию, называемую Clostridium difficile или C. diff, путем добавления здоровых бактерий в кишечник реципиента. ТФМ может выполняться у детей и взрослых.

Исследования показывают, что фекальная трансплантация может восстанавливать здоровые бактерии в нижних отделах кишечника, что может помочь контролировать C. diff и предотвратить его повторное появление. В некоторых случаях FMT может быть более эффективным, чем антибиотики, для контроля C. diff.

Что такое C. diff?

В здоровом пищеварительном тракте живут тысячи бактерий. В большинстве случаев эти бактерии полезны для пищеварения или безвредны. Однако лечение антибиотиками, которое может потребоваться при определенных состояниях, может убить многие полезные бактерии в толстой кишке. Это может позволить плохим бактериям, называемым Clostridium difficile (C. diff), взять верх.

C. diff может вызывать лихорадку, диарею и спазмы. Люди могут заразиться C. diff после лечения антибиотиками от инфекции. У людей старше 65 лет и у людей с хроническими заболеваниями инфекция C. diff может быть тяжелой и даже смертельной.

Трансплантация фекальных микробов: лечение Clostridium Difficile

Кому может понадобиться фекальная трансплантация?

Трансплантация кала может быть вариантом для людей с инфекцией C. diff в толстой кишке, которая постоянно возвращается и вызывает колит (воспаление в толстой кишке).

Несмотря на большой интерес к другим возможным применениям ТФМ при таких состояниях, как воспалительные заболевания кишечника, аутизм и ожирение, нет научных доказательств того, что фекальная трансплантация безопасна и эффективна для лечения проблем, отличных от C. diff. Исследования дополнительных применений FMT продолжаются.

Типы процедур трансплантации кала

Трансплантацию кала обычно проводят с помощью колоноскопии. Гастроэнтеролог проводит колоноскоп по всей длине толстой кишки, и по мере его извлечения раствор, содержащий донорские фекалии, вводится в толстую кишку.

Реже трансплантат доставляется через трубку, вставленную через нос, которая достигает двенадцатиперстной кишки, области, где желудок соединяется с тонкой кишкой. Этот метод не требует подготовки кишечника, но связан с более высоким риском побочных эффектов, таких как аспирационная пневмония.

Иногда ТФМ можно доставлять с помощью капсулы, которую вы проглатываете, или с помощью клизмы.

Доноры фекального трансплантата

В зависимости от того, как ваш врач проводит ТФМ, вы можете получить трансплантат из банка тщательно проверенных доноров или выбрать своего собственного донора.

Подходящим донором для фекальной трансплантации является здоровый взрослый человек, который:

  • Не подвергался воздействию антибиотиков за последние шесть месяцев
  • Нет иммунодефицита
  • Нет риска инфекционных заболеваний
  • Не живет с какими-либо хроническими желудочно-кишечными расстройствами, такими как воспалительное заболевание кишечника

Врач должен пройти обследование потенциального донора на:

  • Гепатиты A, B и C
  • ВИЧ
  • Сифилис
  • Кишечные паразитарные инфекции, такие как лямблиоз или глисты
  • С. трудный
  • Другие заболевания по рекомендации врача

Ваш врач сообщит вам, какие анализы вам потребуются в качестве донора или реципиента ТФМ.

Подготовка к фекальной трансплантации

  • Убедитесь, что ваш врач проинформирован обо всех принимаемых вами лекарствах и возможных аллергиях.
  • Перед процедурой врач даст вам конкретные инструкции по подготовке и обсудит их с вами. Очень важно четко следовать указаниям.
  • Вам необходимо прекратить прием всех антибиотиков за два дня до процедуры.
  • Спросите своего врача обо всех других лекарствах, которые вы принимаете, включая безрецептурные таблетки, травы и пищевые добавки. Врач сообщит вам, следует ли, когда и как принимать эти лекарства во время подготовки к трансплантации.
  • Если ваш трансплантат вводится с помощью колоноскопии, вы будете следовать режиму подготовки кишечника к этой процедуре. Инструкции вашего врача могут включать прозрачную жидкую диету и клизму или слабительный препарат за ночь до процедуры.
  • Если ТФМ проводится с помощью эндоскопии или колоноскопии, вы получите седативное лекарство. Убедитесь, что ответственный взрослый сопровождает вас в день процедуры, чтобы отвезти вас домой после ее завершения.

Что происходит во время процедуры трансплантации кала

Процедуры ТФМ различаются в зависимости от метода доставки трансплантата. Для родоразрешения с помощью колоноскопии гастроэнтеролог подготавливает трансплантат, беря образец донорского стула и смешивая его с солевым (физиологическим) раствором. Фекальный трансплантат на 100% жидкий.

Когда трансплантат будет готов, врач уложит вас на бок в оптимальное положение для проведения колоноскопии, и вы получите седативное лекарство. Врач направляет гибкую трубку с камерой, которая называется эндоскопом или колоноскопом, через задний проход в толстую кишку до места, где толстая кишка встречается с тонкой кишкой. Когда врач извлекает эндоскоп, раствор фекального трансплантата распыляется на стенки толстой кишки.

После процедуры вы можете вернуться домой или в свою больничную палату, где вы должны отдохнуть до конца дня. Ваш врач может попросить вас принять лекарство от диареи перед отъездом, чтобы помочь удержать фекальный трансплантат в толстой кишке, чтобы он мог выполнять свою работу.

Восстановление после фекальной трансплантации

ТФМ считается безопасным и хорошо переносится даже пациентами, больными C. diff, и даже детьми. Большинство побочных эффектов связаны со способом доставки трансплантата. Если вам делают пересадку кала наиболее распространенным методом (колоноскопия), у вас могут возникнуть временные побочные эффекты, такие как:

  • Вздутие живота и кишечные газы
  • Спазмы из-за попадания воздуха в толстую кишку во время процедуры
  • Запор, вызванный приемом противодиарейных препаратов
  • Незначительное подтекание раствора трансплантата через задний проход

Серьезные побочные эффекты встречаются редко, но могут возникнуть. К ним относятся:

  • Заражение другой бактерией или вирусом из кала донора, если донор не был должным образом обследован и протестирован.
  • Пневмония от ТФМ, доставленная через зонд через нос (назогастральный зонд).
  • Стандартные риски колоноскопии или эндоскопии, которые включают инфекцию, кровотечение, разрыв или перфорацию, требующие хирургического вмешательства, и риски анестезии.

Трансплантация фекальной микробиоты: скрининг и выбор для выбора оптимального донора , и другие. Микробиота кишечника и здоровье хозяина: новый клинический рубеж. Кишка. 2016;65:330–339. doi: 10.1136/gutjnl-2015-309990. [Бесплатная статья PMC] [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]

2. Биббо С., Яниро Г., Гасбаррини А., Каммарота Г. Трансплантация фекальной микробиоты: прошлое, настоящее и будущее. Минерва Гастроэнтерол. Диетол. 2017;63:420–430. [PubMed] [Академия Google]

3. Du H., Kuang T.T., Qiu S., Xu T., Gang Huan C.L., Fan G., Zhang Y. Фекальные лекарства, используемые в традиционной медицинской системе Китая: систематический обзор их названий, исходных видов, традиционное использование и современные исследования. Подбородок. Мед. 2019;14:31. doi: 10.1186/s13020-019-0253-x. [Бесплатная статья PMC] [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]

4. Бороди Т.Дж., Уоррен Э.Ф., Лейс С.М., Сурас Р., Ашман О., Сиаракас С. Бактериотерапия с использованием фекальной флоры: игра с движениями человека. Дж. Клин. Гастроэнтерол. 2004; 38: 475–483. дои: 10.1097/01.мкг.0000128988.13808.дц. [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]

5. Гасбаррини Г., Бонвичини Ф., Граменци А. История пробиотиков. Дж. Клин. Гастроэнтерол. 2016;50:С116–С119. doi: 10.1097/MCG.0000000000000697. [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]

6. Eiseman B., Silen W., Bascom G.S., Kauvar A.J. Фекальная клизма как вспомогательное средство при лечении псевдомембранозного энтероколита. Операция. 1958; 44: 854–859. [PubMed] [Google Scholar]

7. Schwan A. , Sjolin S., Trottestam U., Aronsson B. Рецидивирующий Clostridium difficile энтероколит, вылеченный ректальным введением гомологичных фекалий. Ланцет. 1983;2:845. doi: 10.1016/S0140-6736(83)90753-5. [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]

8. Van Nood E., Vrieze A., Nieuwdorp M., Fuentes S., Zoetendal E.G., de Vos W.M., Visser C.E., Kuijper E.J., Bartelsman J.F., Tijssen J.G., и другие. Дуоденальное вливание донорского кала при рецидивах Clostridium difficile. Н. англ. Дж. Мед. 2013; 368: 407–415. doi: 10.1056/NEJMoa1205037. [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]

9. Каммарота Г., Масуччи Л., Яниро Г., Биббо С., Диной Г., Костаманья Г., Сангинетти М., Гасбаррини А. Рандомизированное клиническое исследование: фекальные трансплантация микробиоты с помощью колоноскопии по сравнению с ванкомицином для лечения рецидивирующей инфекции Clostridium difficile. Алимент. Фармакол. тер. 2015;41:835–843. doi: 10.1111/apt.13144. [PubMed] [CrossRef] [Академия Google]

10. Янгстер И. , Рассел Г.Х., Пиндар К., Зив-Баран Т., Саук Дж., Хохманн Э.Л. Пероральная, капсулированная, замороженная трансплантация фекальной микробиоты при рецидивирующей инфекции Clostridium difficile. ДЖАМА. 2014; 312:1772–1778. doi: 10.1001/jama.2014.13875. [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]

11. Каммарота Г., Яниро Г., Тилг Х., Раджилич-Стоянович М., Кумп П., Сатокари Р., Сокол Х., Арккила П., Пинтус С. ., Харт А. и др. Европейская консенсусная конференция по трансплантации фекальной микробиоты в клинической практике. Кишка. 2017;66:569–580. doi: 10.1136/gutjnl-2016-313017. [Бесплатная статья PMC] [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]

12. Lee C.H., Steiner T., Petrof E.O., Smieja M., Roscoe D., Nematallah A., Weese J.S., Collins S., Moayyedi P. ., Кроутер М. и др. Трансплантация замороженной и свежей фекальной микробиоты и клиническое разрешение диареи у пациентов с рецидивирующей инфекцией Clostridium difficile: рандомизированное клиническое исследование. ДЖАМА. 2016; 315:142–149. doi: 10.1001/jama.2015.18098. [PubMed] [CrossRef] [Академия Google]

13. Cammarota G., Ianiro G., Kelly C.R., Mullish B.H., Allegretti J.R., Kassam Z., Putignani L., Fischer M., Keller J.J., Costello S.P., et al. Международная консенсусная конференция по банкам стула для трансплантации фекальной микробиоты в клинической практике. Кишка. 2019;68:2111–2121. doi: 10.1136/gutjnl-2019-319548. [Бесплатная статья PMC] [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]

14. Cavaillon J.M., Legout S. Столетие со дня смерти Эли Мечникова: провидец и выдающийся руководитель группы. микробы заражают. 2016; 18: 577–594. doi: 10.1016/j.micinf.2016.05.008. [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]

15. Вандана Ю.К., Барласкар Н.Х., Гульзар А.Б.М., Ласкар И.Х., Кумар Д., Пол П., Пандей П., Мазумдер П.Б. Связь микробиоты кишечника с заболеваниями человека. Биоинформация. 2020;16:196–208. doi: 10.6026/97320630016196. [Бесплатная статья PMC] [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]

16. Иебба В. , Тотино В., Гальярди А., Сантанджело Ф., Каччиотти Ф., Транскассини М., Манчини К., Чичероне К. , Корацциари Э., Пантанелла Ф. и др. Эубиоз и дисбиоз: две стороны микробиоты. Новый микробиол. 2016;39: 1–12. [PubMed] [Google Scholar]

17. Lozupone C.A., Stombaugh J.I., Gordon J.I., Jansson J.K., Knight R. Разнообразие, стабильность и устойчивость микробиоты кишечника человека. Природа. 2012; 489: 220–230. doi: 10.1038/nature11550. [Бесплатная статья PMC] [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]

18. Янг В.Б., Шмидт Т.М. Обзор микробиоты желудочно-кишечного тракта. Доп. Эксп. Мед. биол. 2008; 635: 29–40. [Бесплатная статья PMC] [PubMed] [Google Scholar]

19. Линь Л., Чжан Дж. Роль кишечной микробиоты и метаболитов в гомеостазе кишечника и заболеваниях человека. БМС Иммунол. 2017;18:2. doi: 10.1186/s12865-016-0187-3. [Бесплатная статья PMC] [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]

20. Forbes J.D., Chen C.Y., Knox N.C., Marrie R.A., El-Gabalawy H., de Kievit T., Alfa M. , Bernstein C.N., Van Domselaar G. Сравнительное исследование микробиоты кишечника при иммуноопосредованных воспалительных процессах. болезни-существует ли распространенный дисбактериоз? Микробиом. 2018;6:221. doi: 10.1186/s40168-018-0603-4. [Бесплатная статья PMC] [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]

21. Аллегретти Дж. Р., Маллиш Б. Х., Келли С., Фишер М. Эволюция использования трансплантации фекальной микробиоты и новые терапевтические показания. Ланцет. 2019;394:420–431. doi: 10.1016/S0140-6736(19)31266-8. [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]

22. Леффлер Д.А., Ламонт Дж.Т. Clostridium difficile Инфекция. Н. англ. Дж. Мед. 2015; 373: 287–288. doi: 10.1056/NEJMra1403772. [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]

23. Десаи К., Гупта С.Б., Дубберке Э.Р., Прабху В.С., Браун С., Маст Т.С. Эпидемиологическое и экономическое бремя Clostridium difficile в Соединенных Штатах: оценки на основе моделирования. Заражение BMC. Дис. 2016;16:303. дои: 10.1186/s12879-016-1610-3. [Бесплатная статья PMC] [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]

24. McDonald L.C., Gerding D.N., Johnson S., Bakken J.S., Carroll K.C., Coffin S.E., Dubberke E.R., Garey K.W., Gould C.V., Kelly C. , и другие. Клинические практические рекомендации по инфекции Clostridium difficile у взрослых и детей: обновление 2017 г., подготовленное Американским обществом инфекционистов (IDSA) и Американским обществом медицинской эпидемиологии (SHEA) Clin. Заразить. Дис. Выключенный. Опубл. Заразить. Дис. соц. Являюсь. 2018;66:987–994. doi: 10.1093/cid/ciy149. [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]

25. Кумар В., Фишер М. Экспертное мнение о трансплантации фекальной микробиоты для лечения инфекции Clostridioides difficile и не только. Мнение эксперта. биол. тер. 2020;20:73–81. doi: 10.1080/14712598.2020.1689952. [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]

26. Каммарота Г., Яниро Г., Магалини С., Гасбаррини А., Гуи Д. Снижение хирургического вмешательства при инфекции Clostridium difficile после запуска программы по пересадке фекальной микробиоты. Анна. Стажер Мед. 2015; 163: 487–488. дои: 10.7326/L15-5139. [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]

27. Бриттон Р.А., Янг В.Б. Взаимодействие между кишечной микробиотой и хозяином при устойчивости к колонизации Clostridium difficile. Тенденции микробиол. 2012;20:313–319. doi: 10.1016/j.tim.2012.04.001. [PMC free article] [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]

28. Bibbo S., Lopetuso L.R., Ianiro G., Di Rienzo T., Gasbarrini A., Cammarota G. Роль микробиоты и врожденного иммунитета при рецидивах Clostridium difficile инфекция. Дж. Иммунол. Рез. 2014;2014:462740. doi: 10.1155/2014/462740. [Бесплатная статья PMC] [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]

29. Вайнгарден А.Р., Чен С., Бобр А., Яо Д., Лу Ю., Нельсон В.М., Садовски М.Дж., Хоруц А. Трансплантация микробиоты восстанавливает нормальный состав фекальных желчных кислот при рецидивирующей инфекции Clostridium difficile. Являюсь. Дж. Физиол. Гастроинтест. Физиол печени. 2014; 306:G310–G319. doi: 10.1152/jpgi.00282.2013. [Бесплатная статья PMC] [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]

30. Weingarden A., Gonzalez A., Vazquez-Baeza Y., Weiss S., Humphry G., Berg-Lyons D., Knights D. , Унно Т., Бобр А., Канг Дж. и др. Динамические изменения краткосрочного и долгосрочного бактериального состава после трансплантации фекальной микробиоты при рецидивирующей инфекции Clostridium difficile. Микробиом. 2015;3:10. doi: 10.1186/s40168-015-0070-0. [Бесплатная статья PMC] [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]

31. Кураиши М.Н., Видлак М., Бхала Н., Мур Д., Прайс М., Шарма Н., Икбал Т.Х. Систематический обзор с метаанализом: эффективность трансплантации фекальной микробиоты для лечения рецидивирующей и рефрактерной инфекции Clostridium difficile. Алимент. Фармакол. тер. 2017; 46: 479–493. doi: 10.1111/apt.14201. [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]

32. Яниро Г., Майда М., Буриш Дж., Симонелли К., Холд Г., Вентимилья М., Гасбаррини А., Каммарота Г. Эффективность различной фекальной микробиоты протоколы трансплантации при инфекции Clostridium difficile: систематический обзор и метаанализ. Объединенный евро. Гастроэнтерол. Дж. 2018;6:1232–1244. doi: 10.1177/2050640618780762. [Бесплатная статья PMC] [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]

33. Дебаст С.Б., Бауэр М.П., ​​Куйпер Э.Дж. Европейское общество клинических M инфекционных заболеваний D. Европейское общество клинической микробиологии и инфекционных заболеваний: обновление руководства по лечению инфекции Clostridium difficile. клин. микробиол. Заразить. 2014; 20:1–26. дои: 10.1111/1469-0691.12418. [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]

34. Surawicz C.M., Brandt L.J., Binion D.G., Anantakrishnan A.N., Curry S.R., Gilligan P.H., McFarland L.V., Mellow M., Zuckerbraun B.S. Рекомендации по диагностике, лечению и профилактике инфекций Clostridium difficile. Являюсь. Дж. Гастроэнтерол. 2013; 108: 478–49.8. doi: 10.1038/ajg.2013.4. [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]

35. Каммарота Г., Яниро Г., Чианчи Р., Биббо С., Гасбаррини А., Курро Д. Участие кишечной микробиоты в патогенезе воспалительного заболевания кишечника: потенциал для терапия. Фармакол. тер. 2015; 149:191–212. doi: 10.1016/j.pharmthera.2014.12.006. [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]

36. Хан И., Улла Н., Чжа Л., Бай Ю., Хан А., Чжао Т., Че Т., Чжан С. Изменение микробиоты кишечника в Воспалительные заболевания кишечника (ВЗК): причина или следствие? Лечение ВЗК, направленное на микробиом кишечника. Возбудители. 2019;8:126. doi: 10.3390/pathogens8030126. [PMC free article] [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]

37. Лопетузо Л.Р., Яниро Г., Аллегретти Дж.Р., Биббо С., Гасбаррини А., Скальдаферри Ф., Каммарота Г. Трансплантация кала при язвенном колите: Текущие доказательства и будущие приложения. Мнение эксперта. биол. тер. 2020; 20: 343–351. doi: 10.1080/14712598.2020.1733964. [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]

38. Каммарота Г., Яниро Г. FMT при язвенном колите: ближе к поворотной точке. Нац. Преподобный Гастроэнтерол. Гепатол. 2019;16:266–268. doi: 10.1038/s41575-019-0131-0. [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]

39. Имдад А. , Николсон М.Р., Таннер-Смит Э.Э., Закулар Дж.П., Гомес-Дуарте О.Г., Болье Д.Б., Акра С. Трансплантация кала для лечения воспалительного заболевания кишечника. Кокрановская система баз данных. Ред. 2018; 11:CD012774. doi: 10.1002/14651858.CD012774.pub2. [Бесплатная статья PMC] [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]

40. Костелло С.П., Конлон М.А., Эндрюс Дж.М. Трансплантация фекальной микробиоты при язвенном колите — ответ. ДЖАМА. 2019;321:2240–2241. doi: 10.1001/jama.2019.3950. [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]

41. Моайеди П., Суретт М.Г., Ким П.Т., Либертуччи Дж., Вулф М., Ониши К., Армстронг Д., Маршалл Дж.К., Кассам З., Райниш В. , и другие. Трансплантация фекальной микробиоты вызывает ремиссию у пациентов с активным язвенным колитом в рандомизированном контролируемом исследовании. Гастроэнтерология. 2015; 149:102–109. doi: 10.1053/j.gastro.2015.04.001. [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]

42. Tariq R., Disbrow M.B., Dibaise J.K., Orenstein R., Saha S., Solanky D. , Loftus E.V., Pardi D.S., Khanna S. Эффективность трансплантации фекальной микробиоты для рецидивирующей, C. Difficile инфекции при воспалительном заболевании кишечника. Воспаление. Кишечник Дис. 2019doi: 10.1093/ibd/izz299. [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]

43. Яниро Г., Эусеби Л.Х., Блэк С.Дж., Гасбаррини А., Каммарота Г., Форд А.С. Систематический обзор с метаанализом: эффективность трансплантации фекальной микробиоты для лечения синдром раздраженного кишечника. Алимент. Фармакол. тер. 2019;50:240–248. doi: 10.1111/apt.15330. [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]

44. El-Salhy M., Hatlebakk J.G., Gilja O.H., Brathen Kristoffersen A., Hausken T. Эффективность трансплантации фекальной микробиоты у пациентов с синдромом раздраженного кишечника в рандомизированном, двойном -слепое плацебо-контролируемое исследование. Кишка. 2020;69: 859–867. doi: 10.1136/gutjnl-2019-319630. [Статья PMC бесплатно] [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]

Серли М.Дж., Оозир Р. и др. Перенос кишечной микробиоты от худощавых доноров повышает чувствительность к инсулину у лиц с метаболическим синдромом. Гастроэнтерология. 2012; 143:913–916. doi: 10.1053/j.gastro.2012.06.031. [PubMed] [CrossRef] [Академия Google]

46. Kootte R.S., Levin E., Salojarvi J., Smits L.P., Hartstra A.V., Udayappan S.D., Hermes G., Bouter K.E., Koopen A.M., Holst J.J., et al. Улучшение чувствительности к инсулину после постных донорских фекалий при метаболическом синдроме обусловлено исходным составом кишечной микробиоты. Клеточный метаб. 2017; 26:611–619. doi: 10.1016/j.cmet.2017.09.008. [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]

47. Zhang Z., Mocanu V., Cai C., Dang J., Slater L., Deehan E.C., Walter J., Madsen K.L. Влияние трансплантации фекальной микробиоты на ожирение и метаболический синдром — систематический обзор. Питательные вещества. 2019;11:2291. дои: 10.3390/nu11102291. [Бесплатная статья PMC] [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]

Отдаленные результаты трансплантации фекальной микробиоты у пациентов с циррозом печени. Гастроэнтерология. 2019;156:1921–1923. doi: 10.1053/j.gastro.2019.01.033. [Бесплатная статья PMC] [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]

49. Bajaj J.S., Salzman N.H., Acharya C., Sterling R.K., White MB, Gavis EA, Fagan A., Hayward M., Holtz M.L., Matherly С. и др. Капсулы фекальных микробных трансплантатов безопасны при печеночной энцефалопатии: рандомизированное плацебо-контролируемое исследование фазы 1. Гепатология. 2019;70:1690–1703. doi: 10.1002/hep.30690. [PMC free article] [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]

50. Huttner B.D., de Lastours V., Wassenberg M., Maharshak N., Mauris A., Galperine T., Zanichelli V., Kapel N. , Белланже А., Олеаро Ф. и др. 5-дневный курс пероральных антибиотиков с последующей фекальной трансплантацией для искоренения носительства энтеробактерий с множественной лекарственной устойчивостью: рандомизированное клиническое исследование. клин. микробиол. Заразить. 2019;25:830–838. doi: 10.1016/j.cmi.2018.12.009. [PubMed] [CrossRef] [Академия Google]

51. Канг Д.В., Адамс Дж.Б., Коулман Д.М., Поллард Э.Л., Мальдонадо Дж., МакДонаф-Минс С., Капорасо Дж.Г., Краймальник-Браун Р. Долгосрочная польза терапии переноса микробиоты в отношении симптомов аутизма и кишечной микробиоты. науч. Отчет 2019;9:5821. doi: 10.1038/s41598-019-42183-0. [Бесплатная статья PMC] [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]

52. Qi X., Li X., Zhao Y., Wu X., Chen F., Ma X., Zhang F., Wu D. Лечение резистентной к стероидам острой кишечной болезни «трансплантат против хозяина» с помощью трансплантации фекальной микробиоты: экспериментальное исследование. Фронт. Иммунол. 2018;9:2195. doi: 10.3389/fimmu.2018.02195. [Бесплатная статья PMC] [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]

53. Вудворт М. Х., Карпентьери С., Ситченко К. Л., Крафт К. С. Проблемы выбора фекального донора и скрининга на трансплантацию фекальной микробиоты: обзор. Кишечные микробы. 2017; 8: 225–237. doi: 10.1080/19490976.2017.1286006. [Бесплатная статья PMC] [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]

54. Кассам З., Дюбуа Н.Е., Линг К., Рамакришна Б., Квази Т., Аллегретти Дж.Р., Фишер М., Келли С.Р., Бадри С. ., Панчал П. и др. 512 — Скрининг здоровья доноров на трансплантацию фекальной микробиоты: проспективная оценка 15 317 доноров-кандидатов. Гастроэнтерология. 2019;156:S100–S101. doi: 10.1016/S0016-5085(19)37042-8. [CrossRef] [Google Scholar]

55. Bakken J.S., Polgreen P.M., Beekmann S.E., Riedo F.X., Streit J.A. Подходы к лечению, включая трансплантацию фекальной микробиоты при рецидивирующей инфекции Clostridium difficile (RCDI) среди врачей-инфекционистов. Анаэроб. 2013;24:20–24. doi: 10.1016/j.anaerobe.2013.08.007. [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]

56. Эдельштейн С., Доу Дж. Р., Кассам З. В поисках безопасного стула: Канаде нужна универсальная донорская модель. CMAJ может. Мед. доц. JJ L’Assoc. Мед. Может. 2016;188:E431–E432. doi: 10.1503/cmaj.150672. [Бесплатная статья PMC] [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]

57. Одамаки Т., Като К., Сугахара Х., Хашикура Н. , Такахаши С., Сяо Дж. З., Абэ Ф., Осава Р. Возрастные изменения состава микробиоты кишечника от новорожденного до столетнего: кросс- секционное исследование. БМС микробиол. 2016;16:90. doi: 10.1186/s12866-016-0708-5. [PMC free article] [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]

58. Fransen F., van Beek A.A., Borghuis T., Aidy S.E., Hugenholtz F., van der Gaast-de Jongh C., Savelkoul H.F.J., De Jonge M.I., Boekschoten M.V., Smidt H., et al. Старая кишечная микробиота способствует системному воспалению после переноса на безмикробных мышей. Фронт. Иммунол. 2017;8:1385. дои: 10.3389/fimmu.2017.01385. [Бесплатная статья PMC] [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]

59. Декер Б.К., Лау А.Ф., Деккер Дж.П., Сполдинг К.Д., Синаи Н., Конлан С., Хендерсон Д.К., Сегре Дж.А., Франк К.М., Палмор Т.Н. Колонизация кишечника медицинского персонала полирезистентными микроорганизмами. клин. микробиол. Заразить. Выключенный. Опубл. Евро. соц. клин. микробиол. Заразить. Дис. 2018;24:82.e81–82.e84. doi: 10. 1016/j.cmi.2017.05.010. [Бесплатная статья PMC] [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]

60. Зборомырская Ю., Вила Дж. Усовершенствованная молекулярная диагностика желудочно-кишечных инфекций на основе ПЦР: проблемы и возможности. Эксперт Преподобный Мол. Диагн. 2016; 16: 631–640. дои: 10.1586/14737159.2016.1167599. [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]

61. Vasilakopoulou A., Karakosta P., Vourli S., Tarpatzi A., Varda P., Kostoula M., Antoniadou A., Pournaras S. Желудочно-кишечный носитель ванкомицина. Устойчивые энтерококки и устойчивые к карбапенемам грамотрицательные бактерии в эндемичных условиях: распространенность, факторы риска и исходы. Фронт. Здравоохранение. 2020;8:55. doi: 10.3389/fpubh.2020.00055. [PMC free article] [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]

62. Шеной Э.С., Парас М.Л., Нубари Ф., Валенский Р.П., Хупер Д.К. Естественная история колонизации метициллинрезистентным золотистым стафилококком (MRSA) и ванкомицин- резистентный энтерококк (VRE): систематический обзор. Заражение BMC. Дис. 2014;14:177. дои: 10.1186/1471-2334-14-177. [Бесплатная статья PMC] [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]

63. Яниро Г., Маллиш Б.Х., Келли К.Р., Сокол Х., Кассам З., Нг С., Фишер М., Аллегретти Дж.Р., Масуччи Л., Чжан Ф. и др. Скрининг доноров фекальной микробиоты для трансплантации во время вспышки COVID-19: предложения по срочным обновлениям от международной группы экспертов. Ланцет Гастроэнтерол. Гепатол. 2020;5:430–432. doi: 10.1016/S2468-1253(20)30082-0. [Бесплатная статья PMC] [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]

64. Ван С., Сюй М., Ван В., Цао С., Пяо М., Хан С., Ян Ф., Цао Х. , Ван Б. Систематический обзор: побочные эффекты трансплантации фекальной микробиоты. ПЛОС ОДИН. 2016;11:e0161174. doi: 10.1371/journal.pone.0161174. [Бесплатная статья PMC] [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]

65. Drewes J.L., Corona A., Sanchez U., Fan Y., Hourigan S.K., Weidner M., Sidhu S.D., Simner P.J., Wang H., Timp W., et al. Передача и клиренс потенциальных проканцерогенных бактерий во время трансплантации фекальной микробиоты при рецидивирующей Clostridioides difficile. Взгляд JCI. 2019; 4 doi: 10.1172/jci.insight.130848. [Бесплатная статья PMC] [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]

66. ДеФилипп З., Блум П.П., Торрес Сото М., Мансур М.К., Сатер М.Р.А., Хантли М.Х., Турбетт С., Чанг Р.Т., Чен Ю.Б., Хохманн Э.Л. Лекарственно-резистентная бактериемия E. coli, передаваемая трансплантатом фекальной микробиоты. Н. англ. Дж. Мед. 2019;381:2043–2050. doi: 10.1056/NEJMoa1910437. [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]

67. Kump P., Wurm P., Grochenig H.P., Wenzl H., Petritsch W., Halwachs B., Wagner M., Stadlbauer V., Eherer A., ​​Hoffmann К.М. и др. Таксономический состав кишечной микробиоты донора является основным фактором, влияющим на эффективность трансплантации фекальной микробиоты при рефрактерном к терапии язвенном колите. Алимент. Фармакол. тер. 2018;47:67–77. doi: 10.1111/apt.14387. [Бесплатная статья PMC] [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]

68. Уилсон Б.К., Ватанен Т., Катфилд В.С., О’Салливан Дж.М. Феномен супердонора при трансплантации фекальной микробиоты. Фронт. Клетка. Заразить. микробиол. 2019;9:2. doi: 10.3389/fcimb.2019.00002. [PMC free article] [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]

69. Блэк С.К., Терманини К.М., Агирре О., Хоксворт Дж.С., Сосин М. Трансплантация паренхиматозных органов в 21-м веке. Анна. Перевод Мед. 2018;6:409. doi: 10.21037/атм.2018.09.68. [Бесплатная статья PMC] [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]

70. Барнс Д., Нг К., Смитс С., Зонненбург Дж., Кассам З., Парк К.Т. Конкурсно отобранная трансплантация фекальной микробиоты донора: концентрация и разнообразие бутирата как показатели качества донора. Дж. Педиатр. Гастроэнтерол. Нутр. 2018;67:185–187. doi: 10.1097/MPG.0000000000001940. [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]

71. Zuo T., Wong S.H., Lam K., Lui R., Cheung K., Tang W., Ching J.Y.L., Chan P.K.S., Chan M.C.W., Wu J.C.Y., и др. др. Перенос бактериофагов при трансплантации фекальной микробиоты при инфекции Clostridium difficile связан с лечением, исходом. Кишка. 2018; 67: 634–643. [Бесплатная статья PMC] [PubMed] [Google Scholar]

72. Ott S.J., Waetzig G.H., Rehman A., Moltzau-Anderson J., Bharti R., Grasis J.A., Cassidy L., Tholey A., Fickenscher H., Seegert D., et al. Эффективность стерильного переноса фекального фильтрата для лечения пациентов с инфекцией Clostridium difficile. Гастроэнтерология. 2017; 152:799–811. doi: 10.1053/j.gastro.2016.11.010. [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]

73. Emanuelsson F., Claesson B.E., Ljungstrom L., Tvede M., Ung K.A. Трансплантация фекальной микробиоты и бактериотерапия при рецидивирующей инфекции Clostridium difficile: ретроспективная оценка 31 пациента. Сканд. Дж. Заразить. Дис. 2014;46:89–97. doi: 10.3109/00365548.2013.858181. [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]

74. Petrof E.O., Gloor G.B., Vanner S.J., Weese S.J., Carter D., Daigneault M.C., Brown E.M., Schroeter K., Allen-Vercoe E. Терапия заменой стула для искоренение инфекции Clostridium difficile: «повторное ПООПулирование» кишечника. Микробиом. 2013;1:3. doi: 10.1186/2049-2618-1-3. [Бесплатная статья PMC] [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]

75. Цзоу М., Цзе З., Цуй Б., Ван Х., Фэн К., Цзоу Ю., Чжан С., Ян Х. , Ван Дж., Чжан Ф. и др. Трансплантация фекальной микробиоты приводит к вытеснению бактериального штамма у пациентов с воспалительными заболеваниями кишечника. Открытая биография ФЭБС. 2020;10:41–55. doi: 10.1002/2211-5463.12744. [Бесплатная статья PMC] [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]

76. Paramsothy S., Kamm M.A., Kaakoush N.O., Walsh A.J., van den Bogaerde J., Samuel D., Leong R.W.L., Connor S., Ng W., Paramsothy R., et al. Мультидонорская интенсивная трансплантация фекальной микробиоты при активном язвенном колите: рандомизированное плацебо-контролируемое исследование. Ланцет. 2017; 389:1218–1228. doi: 10.1016/S0140-6736(17)30182-4. [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]

77. Vermeire S., Joossens M., Verbeke K., Wang J., Machiels K., Sabino J., Ferrante M., Van Assche G., Rutgeerts P. , Raes J. Богатство видов доноров определяет успех трансплантации фекальной микробиоты при воспалительном заболевании кишечника. Колит Дж. Крона. 2016;10:387–394. doi: 10.1093/ecco-jcc/jjv203. [Бесплатная статья PMC] [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]

78. Tian Y., Zhou Y., Huang S., Li J., Zhao K., Li X., Wen X., Li X.A. Трансплантация фекальной микробиоты при язвенном колите: проспективное клиническое исследование. БМК Гастроэнтерол. 2019;19:116. doi: 10.1186/s12876-019-1010-4. [Бесплатная статья PMC] [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]

79. Понсе-Алонсо М., Гарсия-Фернандес С., Агилера Л., Родригес-де-Сантьяго Э., Форуни Дж. Р., Рой Г., DelCampo R., Canton R., Lopez-Sanroman A. P782 Новый тест на совместимость для отбора доноров для трансплантации фекальной микробиоты при язвенном колите. Колит Дж. Крона. 2017;11:S480–S481. дои: 10.1093/ecco-jcc/jjx002.903. [CrossRef] [Google Scholar]

80. Conceicao-Neto N., Deboutte W., Dierckx T., Machiels K., Wang J., Yinda K.C., Maes P., Van Ranst M., Joossens M., Raes Дж. и др. Низкое богатство эукариотических вирусов связано с успехом трансплантации фекальной микробиоты у пациентов с ЯК. Кишка. 2018;67:1558–1559. doi: 10.1136/gutjnl-2017-315281. [Статья PMC бесплатно] [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]

81. Panebianco C., Andriulli A., Pazienza V. Pharmacomicrobiomics: Использование взаимодействий лекарство-микробиота в противоопухолевой терапии. Микробиом. 2018;6:92. doi: 10.1186/s40168-018-0483-7. [PMC free article] [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]

82. Гопалакришнан В., Спенсер С.Н., Нези Л., Рубен А., Эндрюс М.С., Карпинец Т.В., Прието П.А., Висенте Д., Хоффман К. , Wei S.C., et al. Микробиом кишечника модулирует ответ на иммунотерапию анти-PD-1 у пациентов с меланомой. Наука. 2018; 359:97–103. doi: 10.1126/science.aan4236. [PMC free article] [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]

Комменсальный микробиом связан с эффективностью анти-PD-1 у пациентов с метастатической меланомой. Наука. 2018;359: 104–108. doi: 10.1126/science.aao3290. [Бесплатная статья PMC] [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]

84. Маллард А. Онкологи используют микробиом в попытке улучшить результаты иммунотерапии.

Оставьте комментарий